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ITS-CVC

Publicado el Diciembre 21, 2019Diciembre 22, 2019 por Ignacio Pérez

Infecciones del Tracto Sanguíneo asociadas a CVC (ITS-CVC) 


Introducción

La mortalidad de las Bacteremias Asociadas a Cateter (CRBSI por Catheter-Related Blood Stream Infection en inglés) es alta.

En el 2009, APIC (Association for Professionals in Infection Control and Epidemiology) reportó una mortalidad entre 12 a 25%.

Las dos principales referencias internacionales para ITS-CVC son:

  • Guía de práctica clínica de la IDSA para el diagnóstico y manejo de infecciones relacionadas a catéteres intravasculares (2009).
  • Guías para el diagnóstico y tratamiento de infecciones por biofilm de la ESCMID (2014).

El concepto de ITS relacionada a CVC no debe confundirse con el concepto de CLABSI (Central Line Associated Blood Stream Infection) usado para vigilancia de infecciones.

Tipos de CVC

Tipos de CVC [5]

Tipo de CatéterSitio de EntradaLongitudComentarios
Catéter venoso periféricoVenas del antebrazo o mano<7 cmPueden producir flebitis con uso prolongado, rara vez ITS.
Catéter arterialArteria radial, femoral, axilar, braquial o tibial posterior<7cmBajo riesgo de infección, rara vez ITS.
Catéter “midline”En la fosa antecubital hacia la basícila o cefálica, no llega a venas centrasles7 a 20 cmMenos flebitis que catéteres periféricos
CVC no tunelizadosInsertados vía percutánea en venas centrales (subclavia, yugular interna, femoral)> 8 cmRepresentan la principal causa de ITS relacionada a catéteres.
PICCInsertados en la vena basícila, cefálica o braquial, llegan a la VCS>20 cm según el tamaño del pacienteMenor riesgo de ITS que un CVC no tunelizado.
CVC tunelizadoImplantados en las venas subclavia, yugular interna o femoral>8 cm según el tamaño del pacienteTienen un cuff que inhibe la migración de microorganismos al tracto del catéter. Menor riesgo de ITS que un CVC no tunelizado.
Totalmente implantableTunelizados bajo la piel con un puerto subcutáneo al que se accede vía jeringa, se implantan a la vena subclavia o yugular interna.>8cm según el tamaño del pacienteMenor riesgo de ITS relacionada a catéter, mejora la imagen del paciente, no requiere cuidados locales. Sin embargo, debe retirarse quirúrgicamente.
Clasificación de CVC

Clasificación de CVC:

Los CVC pueden ser [1]:

  • Transitorios o de corta duración:
    • CVC tradicional.
    • PICC: peripherally inserted central catheter
    • Catéter de arteria pulmonar (Swan Ganz)
    • Catéter de HD transitorio.

  • Permanentes o de larga duración
    • Tunelizados.
    • Catéter con bolsillo. 
Definiciones de infecciones relacionadas a catéter

Definiciones de infecciones relacionadas a catéter [2]

InfecciónDefinición
Colonización de catéterCrecimiento significativo de uno o más microorganismos en un cultivo cuantitativo o semicuantitativo de la punta del catéter, segmento subcutáneo del catéter o puerto del catéter.
FlebitisInduración o eritema, calor y dolor en torno al tracto de una vena cateterizada
Infección de sitio de salida – Definición MicrobiológicaExudado del sitio de salida se cultiva (+) para un microorganismo, con o sin ITS concomitante.
Infección de sitio de salida – Definición ClínicaEritema, induración o dolor en los primeros 2cm del sitio de salida del catéter, puede asociarse a otros signos y síntomas de infección: fiebre, drenaje purulento, con o sin ITS concomitante.
Infección del tunelDolor, eritema y/o induración más allá de 2cm de la salida del catéter, en relación al tracto subcutáneo de un cateter tunelizado, con o sin ITS concomitante.
Infección del bolsilloLíquido infectado en el bolsillo subcutáneo de un dispositivo intravascular implantado. Se asocia a dolor, eritema y/o induración sobre el bolsillo. Puede presentar rotura espontánea y drenar, o necrosis de la piel que lo cubre, con o sin ITS concomitante.
ITS relacionada a la InfusiónCrecimiento concordante de MO en la infusión y en hemocultivos periféricos sin otra fuente de infusión
ITS relacionada al catéterBacteremia o fungemia en un paciente con dispositivo intravascular, y al menos 1 HC positivo de una vena periférica, asociado a manifestaciones clínicas de infección y sin fuente aparente de ITS

ITS = Infección del Tracto Sanguíneo

Este artículo trata sobre ITS relacionada al Catéter.

Mecanismos de Infección

Existen 4 mecanismos de contaminación de CVC [4]

1. Vía Extraluminal

Los catéteres involucran pasar a través de la piel a un vaso sanguíneo. La piel tiene colonización (S. Aureus, S. coagulasa negativo, Streptococos), y eso lleva a la formación de biofilms alrededor del CVC.

En un CVC de triple lúmen, la distancia entre la piel y la vena es corta. Eso es igualmente cierto en vías venosas periféricas; mientras que los CVC tunelizados tienen un tracto subcutáneo largo. Mientras más larga la distancia, menor riesgo de infección por vía extraluminal porque las bacterias deben migrar ese tracto.

Acá la infección se origina desde el sitio de inserción, por lo que es una infección extraluminal.

2. Vía puertos del catéter

En un paciente con CVC de 3 puertos, se harán distintas conecciones a estos puertos, lo que implica manipulación frecuente.

Esto lleva a infecciones intraluminales.

3. Hematógena

Los microbios pueden llegar desde la sangre. En una bacteremia, las bacterias pueden llegar al cateter en relación a la vaina de fibrina formada al ingresar al vaso sanguíneo, pudiendo armar un biofilm y perpetrandose.

Se trata de una infección intraluminal.

4. Infusión contaminada

Ej: NTPC, medicamentos, etc. También es posible contaminar la infusión por “reflujo”, cuando la bolsa que contiene lo que se va a infundir queda bajo el nivel del paciente, refluyendo el material a la bolsa por gravedad.

Se trata de una infección intraluminal.

Factores de Riesgo

Factores de Riesgo:

Tipo de catéter:  Catéter de HD se infectan más que los catéteres tradicionales.

Duración del dispositivo: Mientras más días, mayor riesgo de infección.

Sitio de inserción: Los catéteres femorales tienen mayor riesgo de infección que uno subclavio o yugular.

Características del paciente:

  • Edades extremas
  • Uso de corticoides
  • Enfermedades de base: DM, trasplantados.
  • Quemados y compromiso de integridad cutánea
  • Malnutridos
  • Oncológicos:
    • Neutropenia.
    • Trasplante de células madres / organo sólido.
  • Inmunosupresión.

Uso del catéter: NPT, Hemodialisis.

Tipo de catéter: Implantable, Tunelizado, PICC, CVC no tunelizado.

Uso de estrategias preventivas pueden disminuir el riesgo (Bundles).

Cobertura con agentes antisépticos/antimicrobianos (taurolidina)

Etiología de las ITS-CVC

Etiología de las ITS-CVC:

Principales agentes

Los agentes etiológicos difieren según si el catéter fue insertado de forma percutánea o quirúrgica [7]:

Catéteres insertados percutáneos

  • S. Coagulasa Negativo
  • S. Aureus
  • Candida
  • BGN entéricos

Catéteres de inserción qx o PICC

  • S. Coagulasa Negativo
  • BGN entéricos
  • S. Aureus
  • P. aeruginosa

La base de datos SCOPE de la CDC [8] recopiló la incidencia de las bacteremias nosocomiales, mostrando una desviación hacia gram positivos y cándida, probablemente secundaria al uso de catéteres.

AgentePorcentaje
S. Coagulasa Negativo31%
S. Aureus20%
Entereococus9.4%
Cándida9%
E. Coli5.6%
Klebsiella4.8%
Pseudomonas4.3%

Vemos que el 60% de los agentes de bacteremias en general son gram positivos, y si consideramos Candida (9%) representan un 70%. El resto son bacilos gram negativos (E. Coli, Klebsiella, Pseudomonas).

La definición de los estafilococo coagulasa-negativo está pensada para distinguir los S. aureus de otros estafiococos menos patogénicos (menos propiedades de virulencia) [7]. Como grupo, representan uno de los principales patógenos nosocomiales, donde los más significativos son el S. epidermidis y el S. haemolyticus.

Otras consideraciones [6]

Stenotrophomonas: mayor prevalencia en pacientes oncológicos.

Cándida: pacientes con “hiperalimentación” (soluciones ricas en glucosa)

Bacilos gram negativos multiresistentes en pacientes con hospitalizaciones previas o exposición a antibióticos.

Pseudomonas: pacientes quemados.

BGN y enteropatógenos: pacientes con cáncer debido a alteración de barreras mucosas.

Anaerobios: Rara vez causan ITS-CVC.

Criterios Diagnósticos de ITS-CVC – Métodos no conservadores (removiendo el catéter)

Criterios Diagnósticos de ITS-CVC – Métodos no conservadores (removiendo el catéter)

Lo primero es contar con un hemocultivo periférico que demuestre bacteremia o fungemia en un paciente con clínica de infección y ausencia de otra fuente. 

Retirando el catéter: crecimiento del mismo MO en el cultivo de la punta. S: 45-85%, E: 85%

  • Método semicuantitativo (Descrito por Maki en 1977, desde donde saca su nombre): Consiste en hacer rodar un segmento del catéter (5cm del extremo distal) sobre una placa de agar sangre 4 veces hacia delante y atrás.  Se considera positivo (colonización de la punta del catéter) la presencia de más de >15 UFC. 

  • Método cuantitativo: >10^2 UFC. 

Nota: Lo más sugerente de ITS-CVC es que el paciente mejora al retirar el CVC.

Manifestaciones Clínicas

Manifestaciones Clínicas

Síntomas inespecíficos:

  • Fiebre/calofríos.
  • Hipotensión
  • Taquicardia
  • Compromiso de conciencia

Síntomas “específicos”:

  • Inflamación del sitio de inserción.
  • Endocarditis
  • Osteomielitis / Espondilodiscitis.
  • Disfunción de catéter.
Criterios Diagnósticos de ITS-CVC – Métodos conservadores (manteniendo el catéter)

Criterios Diagnósticos de ITS-CVC – Métodos conservadores (manteniendo el catéter)

Método de concentración diferencial (cuantitativo): 

Menos disponible. Requiere 2 hemocultivos cuantitativos simultáneos con una razón mayor a 3:1 (central v/s periférico). 

S: 93% – E: 97-100%.

Método del tiempo diferencial:

Es el más utilizado de los conservadores. Requiere un tiempo de al menos dos horas en el inicio de la positividad, siendo primero el CVC y luego el periférico. 

S: 94% – E: 91%

Nota: Lo más sugerente de ITS-CVC es que el paciente mejora al retirar el CVC. 

Sobre la toma de Hemocultivos

Sobre la toma de Hemocultivos

Lo ideal es tomar hemocultivos de arrastre del CVC y dos sets de HC periféricos (cada set son dos HC).

Estos hemocultivos (periféricos y centrales) deben:

  1. Tomarse al mismo tiempo (pero se recomienda partir con el CVC porque puede ser más difícil, y si se parte por el periférico esto puede retrasar la obtención del hemocultivo CVC). 
  2. Ser de igual volumen (10 cc).
  3. Los cultivos del CVC deben tomarse de los lúmenes de mayor uso (2 frascos por cada lúmen).

¡Es muy importante que se etiqueten las botellas para reflejar el sitio de obtención!


CVC Transitorio

Enfrentamiento inicial para el diagnóstico en fiebre y CVC transitorio:

Enfrentamiento inicial para el diagnóstico en fiebre y CVC transitorio:

En un paciente con un CVC transitorio instalado y fiebre:

  • Cuadro de leve o moderada gravedad, sin signos locales del CVC => Tomar hemocultivos periféricos y hemocultivos de arrastre.
  • Cuadro grave (inestabilidad hemodinámica) o signos de infección local asociada => Retirar CVC y enviar a cultivo la punta del catéter + hemocultivos periféricos.
Retiro de CVC transitorio

Retiro de CVC transitorio

Conceptualmente, es recomendable retirarlo en todos los casos, especialmente si:

  • S. aureus
  • BGN (especialmente no fermentadores)
  • Enterococcus spp.
  • Hongos
  • Micobacterias

En infecciones del tracto sanguíneo asociadas a CVC por S. coagulasa negativo, podría mantenerse el CVC transitorio y utilizar ATB sistémicos + Lock Therapy por 10 a 14 días. 


CVC Permanente

Enfrentamiento inicial para el diagnóstico en fiebre y CVC permanente

Enfrentamiento inicial para el diagnóstico en fiebre y CVC permanente:

En un paciente con un CVC permanente y fiebre:

  • Cuadro leve o moderada gravedad, sin signos locales del CVC => Tomar hemocultivos periféricos y arrastre. En caso de obtenerse los siguientes patógenos, igualmente debe retirarse el CVC periférico.
    • S. aureus
    • P. aeruginosa
    • A. Baumanii
    • Stenotrophomonas maltophila
    • Hongos
    • Micobacterias.

  • En casos graves (ver lista), debe retirarse el CVC y enviar a cultivo la punta y hemocultivos periféricos. 
    • Sepsis severa
    • Tromboflebitis supurativa
    • Endocarditis infecciosa u otras complicaciones
    • Sin respuesta o HC se mantienen (+) a las 72 horas.

Tratamiento

Contaminación

Contaminación. 

Frecuentes contaminantes son:

  • S. coagulasa negativo.
  • Bacillus spp.
  • Propionibacterium spp.

Para descartar contaminación, deben repetirse los HC centrales y periféricos. 

Tratamiento Empírico – Grupos Etiológicos y Consideraciones

Tratamiento Empírico – Grupos Etiológicos y Consideraciones. 

En la práctica el tratamiento empírico es Vancomicina + Cefepime o Vancomicina + Pip-tazo o Vancomicina + Amikacina. 

Sin embargo, deben considerarse los siguientes grupos etiológicos, y justificar su uso según las consideraciones descritas. 

CGP:

  • Vancomicina (en centros con alta prevalencia de SAMR), no linezolid empírico.
  • Si SAMS, ajustar a Cefazolina.

BGN:

  • Cefalosporina de 4ta generación (Cefepime), Carbapenémicos, Betalactámicos con inhibidor de betalactamasa o Amikacina.
  • ¿Cobertura pseudomonas?
    • Neutropenico
    • Sepsis severa
    • Colonización previa.

Levaduras:

  • Equinocandinas.
  • ¿Cuándo puedo usar fluconazol (dosis altas)? (deben cumplirse todas)
    • Estabilidad clínica
    • No expuesto a azoles en los últimos 3 meses.
    • Centro con C. glabrata y krusei infecruente. 

Consideraciones:

  • Cobertura empírica para BNG en 
    • Pacientes sépticos graves
    • Neutropénicos
    • CVC femoral. 
  • Cobertura empírica antifúngica en:
    • NPT
    • uso de ATB con amplio espectro prolongado
    • Onco-hematológicos
    • Trasplantados
    • CVC femoral
    • Cándida en múltiples.
Tratamiento Empírico – Duración según Etiología. 

Tratamiento Empírico – Duración según Etiología. 

Todas las duraciones se cuentan desde el retiro del catéter. 

Coagulasa negativo: 5 a 7 días. Si se mantuvo el CVC, 10 a 14 días.

BGN: 7 a 14 días.

Enterococcus spp: 7 a 14 días.

S. Aureus: Mínimo 14 días.  (S. lugdunensis se maneja igual que S. aureus)

Candida spp: Mínimo 14 días. 

Tratamiento – Casos Especiales 

Tratamiento – Casos Especiales

Caso 1: MAKI positivo con HC (-):

No se trata a menos que el MAKI sea (+) S. aureus.

Caso 2: ¿Cuándo hacer guidewire exchange?

En casos donde sea necesario retirar el cateter pero no haya sepsis, y el riesgo de volver a insertar el catéter en otro lado sea alto. Debe cultivarse la punta del antiguo, y retirar el nuevo para reinsertar si el cultivo es (+).

Tratamiento – Infección Sitio de Salida 

Cuando se instala un CVC tunelizado, existe un sitio de inserción y un sitio de salida.

El sitio de inserción es donde se canula la vena. Esa salida se toma se le crea un tunel que va a al sitio de salida.

Ahí es donde el cateter sale, y el sitio de inserción es donde se canulo la vena. Ese tiene la distancia más corta a la vena, y está en el sitio distal del tunel.

Pueden manejarse con antibióticos tópicos si no hay ITS. Si fallan, puede intentarse antibióticos sistémicos.

Lock Therapy

Lock Therapy

Pacientes con CVC permanente (hemodiálisis), sin evidencia externa de infección, en que es absolutamente indispensable conservar el catéter.

Consiste en la instilación de antibióticos en el CVC cuando no se utiliza (12 horas) y/o al menos cada 48 horas. Siempre en conjunto con antibióticos sistémicos por al menos 7 a 14 días.

El objetivo es exponer al lúmen del catéter con concentraciones altas de antimicrobianos para matar el biofiml.

Fuentes: 

Basado en una clase del Dr. Javier Tinoco Cahuana para Residentes de Medicina Interna de la Universidad de los Andes – 2019

[1] Diagnóstico de las infecciones asociadas a catéteres vasculares centrales – Patricia García et. al – Rev Chil Infect (2003); 20 (1): 41-50. DOI: http://dx.doi.org/10.4067/S0716-10182003000100006

[2] Clinical Practice Guidelines for the Diagnosis and Management of Intravascular Catheter-Related Infection: 2009 Update by the Infectious Diseases Society of America – Clinical Infectious Diseases, Volume 49, Issue 1, 1 July 2009, Pages 1–45, https://doi.org/10.1086/599376

[3] ESCMID guideline for the diagnosis and treatment of biofilm infections 2014 – Clin Microbiol Infect. 2015 May;21 Suppl 1:S1-25. doi: 10.1016/j.cmi.2014.10.024. Epub 2015 Jan 14

[4] “Prevention of Intravascular Catheter-Related Infections,” by L.A. Mermel, 2000, Annals of Internal Medicine, 132, p. 392. 

[5] Guidelines for the Prevention of Intravascular Catheter-Related Infections, 2011 – CDC

[6] Intravascular Catheter-Related Infections – Dr. Richard L. Oehler, MD. Morsani College of Medicine @ USF (Youtube, 2018)

[7] Catheter Related Bloodstream Infections – Thayra Molinary, USF College of Pharmacy – February 27, 2015 (Youtube)

[8] Nosocomial Bloodstream Infections in US Hospitals: Analysis of 24,179 Cases from a Prospective Nationwide Surveillance Study – H. Wisplinghoff (PMID: 15306996)

Categoría: Destacadas/Infectología

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